Структурно-функциональная характеристика печени при воздействии различных доз тетрабората натрия

Целью исследования явилось изучение морфофункциональных преобразований в печени при воздействии тетрабората натрия.

Материал и методы. С использованием обзорных гистологических, гистохимических, иммуноцитохимических и морфометрических методов исследовали морфофункциональную характеристику печени белых беспородных крыс в условиях однократного и длительного воздействия тетрабората натрия. Животным первой группы однократно внутрижелудочно вводили тетраборат натрия в дозе ЛД50, животным второй группы ежедневно в течение месяца вводили тетраборат натрия в дозе 1/10 ЛД50. Контрольная группа животных получала физраствор. Животных первой группы выводили из опыта через сутки после введения тетрабората натрия, животных второй группы – через 7, 14, 21 и 30 сут после начала опыта.

Результаты. Как при однократном, так и при длительном воздействии тетрабората натрия в дольках печени отмечаются множественная очаговая гибель гепатоцитов, нарушение микроциркуляции, застой желчи в желчевыводящих путях. Выраженность повреждения и гибели гепатоцитов увеличивается от периферии к центру дольки. При длительном воздействии тетрабората натрия в первую половину эксперимента стаз форменных элементов крови в капиллярах встречался редко, а с увеличением сроков эксперимента (с 7 до 30 суток) доля синусоидных капилляров с застоем форменных элементов возрастала. Деструктивные изменения в печени были более выраженными при воздействии препарата в дозе ЛД50.

Заключение. При воздействии низких концентраций тетрабората натрия в печени развиваются  как деструктивные, так и компенсаторно-приспособительные морфогенетические изменения. С увеличением дозы тетрабората натрия адаптационные возможности органа исчерпываются и не компенсируют возникающих повреждений клеточных структур органа.

1. Байгильдин С. С., Хуснутдинова С. Ю., Смолянкин Д. А., Репина Э. Ф., Каримов Д. О. Влияние различных доз тетрахлорметана на строение печени крыс в остром эксперименте. Морфология. 2018; 153(3): 29–30 [Baigildin SS, Khusnutdinova NYu, Smolyankin DA, Repina EF, Karimov DO. The effect of various doses of tetrachloromethane on rat liver structure in an acute experiment. Morfologiia. 2018;153(3):29–30] (in Russian).

2. Вавилов П. С., Катаев С. И., Черненко Н. В., Новикова М. М. Влияние этанола на сосудистопаренхиматозные структуры печени и печеночных регионарных лимфоузлов. Журнал анатомии и гистопатологии. 2015; 4(3): 30 – 31 [Vavilov PS, Kataev SI, Chernenko NV, Novikova MM. The effect of ethanol on vascularparenchymal structures of liver and hepatic lymph nodes. Journal of Anatomy and Histopathology. 2015;4(3):30–1] (in Russian).

3. Журавский С. Г., Юкина Г. Ю., Крыжановская Е. А. Морфологическая оценка печени крыс после парентерального введения наночастиц диоксида кремния. Морфология. 2018; 153(3): 108–109 [Zhuravskiy SG, Yukina GY, Kryzhanovskaya YA. Morphological assessment of rat liver after parenteral administration of silicon dioxide nanoparticles. Morfologiia. 2018;153(3):108–9] (in Russian).

4. Зайко О. А., Якубенко О. В., Асташов В. В., Синдирева А. В., Мозговой С. И. Морфофункциональные преобразования печени в условиях острой интоксикации селенитом натрия и их коррекция. Морфология. 2017; 151(1): 33–36 [Zayko OA, Yakubenko OV, Astashov VV, Sindireva AV, Mozgovoy SI. Morpho-functional changes of the liver in an acute intoxication with sodium selenite and their correction. Morfologiia. 2017;151(3):33–6] (in Russian).

5. Мильто И. В. Макрофаги печени, легких, почек и селезенки у крыс после внутривенного введения модифицированных наноразмерных частиц магнетита. Морфология. 2014; 146(5): 40 – 45 [Mil’to IV. Liver, lung, kidney and spleen macrophages in rats after intravenous administration of the modified magnetite nanoparticles. Morfologiia. 2014;146(5):40–5] (in Russian).

6. Новак К. Е., Карев В. Е., Дунаева Н. В., Эсауленко Е. В. Характеристика регенераторной способности печени (по экспрессии ki67) у больных с неблагоприятными исходами хронических вирусных гепатитов. Фундаментальные исследования. 2011; 6: 138–143 [Novak KE, Karev VE, Dunaeva NV, Esaulyenko EV. Characteristics of liver regeneration ability (by ki-67 expression) of patients with adverse outcomes of chronic viral hepatitis. Fundamental Research. 2011;(1):138–143] (in Russian).

7. Рыкало Н. А., Гуминская О. Ю., Мнихович М. В., Жакота Д. А., Казанцева Г. П., Соколов Д. А., Филин А.А. Особенности репаративной регенерации печени неполовозрелых крыс на фоне хронического медикаментозного гепатита. Журнал анатомии и гистопатологии. 2016; 5(1): 83–85 [Rykalo NA, Guminskaya OY, Mnikhovich MV, Zhakota DA, Kazantseva GP, Sokolov DA, et al. Reparative Regeneration Features of the Immature Rats Liver on the Background of Chronic Drug-Induced Hepatitis. Journal of Anatomy and Histopathology. 2016;5(1):83–5] (in Russian).

8. Сипайлова О. Ю., Корнеев Г. И., Мирошников С. А., Сизова Е. А., Русакова Е. А. Гепатотоксический эффект наночастиц оксидов металлов (ZnO и CuO). Морфология. 2017; 151(1): 44–48 [Sipailova OY, Korneev GI, Miroshnikov SA, Sizova EA, Rusakova EA. Hepatotoxic effect of nanoparticles of metal oxides (ZnO and CuO). Morfologiia. 2017;151(1):44–8] (in Russian).

9. Щеголев А. И., Явалов С. П., Мишнев О. Д. Нарушения структурно-метаболической организации ацинусов печени при системной эндотоксинемии. Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. 1995; 120(12): 643–646 [Shchegolev AI, Yavalov SP, Mishnev OD. Narusheniya strukturno-metabolicheskoi organizatsii atsinusov pecheni pri sistemnoi endotoksinemii. Bulletin of Experimental Biology and Medicine. 1995;120(12):643–6] (in Russian).

10. Basoglu A, Sevinc M, Birdane FM, Boydak M. Efficacy of Sodium Borate in the Prevention of Fatty Liver in Dairy Cows. Journal of Veterinary Internal Medicine. 2002 Nov;16(6):732–5. doi: 10.1111/j.1939-1676.2002.tb02416.x

11. Bustos-Obregón E, Hartley Belmar R, CatriaoGálvez R. Histopathological Effects of Boron on Mouse Liver. International Journal of Morphology. 2008 Mar;26(1):155–64. doi: 10.4067/s0717-95022008000100026

12. Devirian TA, Volpe SL. The Physiological Effects of Dietary Boron. Critical Reviews in Food Science and Nutrition. 2003 Mar;43(2):219–31. doi: 10.1080/10408690390826491

13. Enescu A, Mitrut P, Buteica E, Stanoiu B. Druginduced hepatitis - morphological and ultrastructural aspects. Romanian Journal of Morphology and Embryology. 2007;48(4):449–54.

14. Goldbach HE, Wimmer MA. Boron in plants and animals: Is there a role beyond cell-wall structure? Journal of Plant Nutrition and Soil Science. 2007 Feb;170(1):39–48. doi: 10.1002/jpln.200625161

15. Hammond JS, Guha IN, Beckingham IJ, Lobo DN. Prediction, prevention and management of postresection liver failure. British Journal of Surgery. 2011 Jul 4;98(9):1188–200. doi: 10.1002/bjs.7630

16. Hu Q, Li S, Qiao E, Tang Z, Jin E, Jin G, et al. Effects of Boron on Structure and Antioxidative Activities of Spleen in Rats. Biological Trace Element Research. 2014 Feb 5;158(1):73–80. doi: 10.1007/s12011-014-9899-5

17. Michalopoulos GK. Advances in liver regeneration. Expert Review of Gastroenterology & Hepatology. 2014 Jun 26;8(8):897–907. doi: 10.1586/17474124.2014.934358

18. Michalopoulos GK. Liver regeneration. Journal of Cellular Physiology. 2007;213(2):286–300. doi: 10.1002/jcp.21172

19. Michalopoulos GK. The Liver Is a Peculiar Organ When It Comes to Stem Cells. The American Journal of Pathology. 2014 May;184(5):1263–7. doi: 10.1016/j.ajpath.2014.02.020

20. Nielsen FH. Update on human health effects of boron. Journal of Trace Elements in Medicine and Biology. 2014 Oct;28(4):383–7. doi: 10.1016/j.jtemb.2014.06.023

21. Uluisik I, Karakaya HC, Koc A. The importance of boron in biological systems. Journal of Trace Elements in Medicine and Biology. 2018 Jan;45:156–62. doi: 10.1016/j.jtemb.2017.10.008