Новый гистохимический подход для оценки экспрессии триптазы в популяции тучных клеток

Для изучения селективного влияния тучных клеток на состояние специфического тканевого микроокружения необходима детализация молекулярного состава их секретома и анализ путей дегрануляции. Разработанный метод сочетания иммуноморфологического и гистохимического протоколов окрашивания триптазы способствует более объективному определению интегрального уровня экспрессии специфической протеазы в популяции тучных клеток кожи. Дополнительные возможности визуализации цитологических характеристик и особенностей процессинга триптазы расширяют эффективность морфологического анализа как в норме, так и при патологии.

тучные клетки, триптаза, метахромазия, специфическое тканевое микроокружение, кожа

1. Атякшин Д.А., Бурцева А.С., Соколов Д.А. Оценка эффективности выявления тучных клеток в тощей кишке монгольских песчанок с помощью гистохимических методик. Журнал анатомии и гистопатологии. 2016;5(4):85–9

2. Атякшин Д.А., Бухвалов И.Б., Павлова Т.В., Тиманн М. Гистохимия. Учебно-мтеодическое пособие. Воронеж: Научная книга; 2018

3. Кондашевская М.В. Тучные клетки и гепарин – ключевые звенья в адаптивных и патологических процессах. Вестник российской академии медицинских наук. 2010; 6: 49–54

4. Омельяненко Н.П., Слуцкий Л.И. Соединительная ткань. (гистофизиология и биохимия). Под ред. Миронова С.П. Москва: Известия; 2009

5. Орлов А.И. Прикладная статистика. М.: Экзамен; 2006.

6. Федорова Е.А., Суфиева Д.А., Григорьев И.П., Коржевский Д.Э. Тучные клетки эпифиза человека. Успехи геронтологии. 2018; 31(4): 484– 489

7. Atiakshin D, Buchwalow I, Samoilova V, Tiemann M. Tryptase as a polyfunctional component of mast cells. Histochemistry and Cell Biology. 2018 Mar 12;149(5):461–77.

8. Atiakshin D, Samoilova V, Buchwalow I, Boecker W, Tiemann M. Characterization of mast cell populations using different methods for their identification. Histochemistry and Cell Biology. 2017 Feb 27;147(6):683–94. doi: 10.1007/s00418- 017-1547-7

9. Buchwalow I, Boecker W, Tiemann M. The contribution of Paul Ehrlich to histochemistry: a tribute on the occasion of the centenary of his death. Virchows Arch. 2015 Jan;466(1):111–6.

10. Buchwalow IB, Boöcker W. Immunohistochemistry: Basics and Methods. 1st ed. London: New York: Springer; 2010.

11. Buckley M., Walls A.F. Identification of mast cells and mast cell subpopulations. Methods Mol Med. 2008;138:285–97.

12. Dubuc V, Laverty S, Richard H, Doré M, Theoret C. Development of a computer-based quantification method for immunohistochemically-stained tissues and its application to study mast cells in equine wound healing (proof of concept). BMC Vet Res. 2020 Jul 2;16(1):228. doi: 10.1186/s12917-020-02444-x

13. Elieh Ali Komi D, Wöhrl S, Bielory L. Mast Cell Biology at Molecular Level: a Comprehensive Review. Clin Rev Allergy Immunol. 2020 Jun;58(3):342–65.

14. Enerback L. Berberine sulphate binding to mast cell polyanions: a cytofluorometric method for the quantitation of heparin. Histochemistry. 1974;42:301–13.

15. Kim HS, Kawakami Y, Kasakura K, Kawakami T. Recent advances in mast cell activation and regulation. F1000Research. 2020 Mar 19;9:196. doi: 10.12688/f1000research.22037.1

16. Komi DEA, Khomtchouk K, Santa Maria PL. A Review of the Contribution of Mast Cells in Wound Healing: Involved Molecular and Cellular Mechanisms. Clin Rev Allergy Immunol. 2020 Jun;58(3):298–312. doi: 10.1007/s12016-019- 08729-w

17. Lyons DO, Pullen NA. Beyond IgE: Alternative Mast Cell Activation Across Different Disease States. International Journal of Molecular Sciences. 2020 Feb 22;21(4):1498. doi: 10.3390/ijms21041498

18. Sridharan G, Shankar A. Toluidine blue: A review of its chemistry and clinical utility. Journal of Oral and Maxillofacial Pathology. 2012;16(2):251–5.

19. Wong E, Morgan EW, MacDonald DM. The chloroacetate esterase reaction for mast cells in dermatopathology: a comparison with metachromatic staining methods. Acta Derm Venereol. 1982;62:431–4.