ВОЗРАСТНЫЕ ИЗМЕНЕНИЯ ГИСТОАРХИТЕКТОНИКИ МИЕНТЕРАЛЬНОГО НЕРВНОГО СПЛЕТЕНИЯ В РАЗНЫХ ОТДЕЛАХ ОБОДОЧНОЙ КИШКИ У КРЫС ВИСТАР

Цель исследования - изучить возрастные изменения гистоархитектоники миентерального нервного сплетения (МНС) в разных отделах ободочной кишки (ОК) у крыс Вистар. Материал и методы. Работа выполнена на 24 самцах крыс Вистар (n=6 в каждой возрастной группе): новорожденных (3-4 суток), препубертатного возрастного периода (25-30 суток), половозрелых (3 месяцев) и старых (18-24 месяцев). ОК разделяли на проксимальный и дистальный отделы. Применяли гистологические, иммунофлуоресцентные и морфометрические методы исследования. Результаты. При иммунофлуоресцентном исследовании маркированых βIII-тубулином структур МНС в период от новорожденности до препубертатного отмечен интенсивный рост МНС, характеризующийся увеличением площади межганглионарных пространств и толщины нервных трактов. Возрастные изменения МНС, выявляемые при помощи антител к HuC/D и S100, характеризовались снижением относительного числа ганглиев и пропорциональным увеличением их размеров. Региональных различий МНС в проксимальном и дистальном отделах ОК не выявлено. Выводы. В период от новорожденности до препубертатного у самцов крыс Вистар отмечается интенсивный рост МНС, характеризующийся увеличением площади межганглионарных пространств и толщины нервных трактов. Возрастные изменения МНС характеризуются снижением относительного числа ганглиев и пропорциональным увеличением их размеров, что, очевидно, связано с повышением количества аксонов нейронов и глиальных клеток. Гистоархитектоника МНС в проксимальном и дистальном отделах ободочной кишки не различается.

миентеральное нервное сплетение, ганглии, нервные волокна, гистоархитектоника, толстая кишка, крыса, возрастные изменения, постнатальное развитие, enteric nervous plexus, ganglia, nerve fibers, histoarchiteconics, colon, rat, age-related changes, postnatal development

1. Ноздрачев А. Д. Физиология вегетативной нервной системы. Л.: Медицина; 1983.

2. Bitar K. N. V. Aging and gastrointestinal smooth muscle: from signal transduction to contractile proteins. American Journal of Physiology-Gastrointestinal and Liver Physiology. 2003; 284(1): G1-G7.

3. Blechman M. B., Gelb A. M. Aging and gastrointestinal physiology. Clinics in geriatric medicine. 1999; 15(3): 429-438.

4. Carloni M., et al. The impact of early life permethrin exposure on development of neurodegeneration in adulthood. Experimental gerontology. 2012; 47(1): 60-66.

5. Cossais F., et al. Postnatal development of the myenteric glial network and its modulation by butyrate. American Journal of Physiology-Gastrointestinal and Liver Physiology. 2016; 310(11): G941-G951.

6. Cowen T., et al. Restricted diet rescues rat enteric motor neurones from age related cell death. Gut. 2000; 47(5): 653-660.

7. Fehér E., Penzes L. Density of substance P, vasoactive intestinal polypeptide and somatostatin-containing nerve fibers in the ageing small intestine of the rats. Gerontology. 1987; 33(6): 341-348.

8. Furness J. B. The enteric nervous system and neurogastroenterology. Nature Reviews Gastroenterology and Hepatology. 2012; 9(5): 286-294.

9. Helander H. F. Morphological studies on the development of the rat colonic mucosa. Cells Tissues Organs. 1973; 85(2): 153-176.

10. Iacopetta B. Are there two sides to colorectal cancer? International journal of cancer. 2002; 101(5): 403-408.

11. Gabella G. Fall in the number of myenteric neurons in aging guinea pigs. Gastroenterology. 1989; 96(6): 1487-1493.

12. Geboes K., Collins S. Structural abnormalities of the nervous system in Crohn's disease and ulcerative colitis. Neurogastroenterology & Motility. 1998; 10(3): 189-202.

13. Liu M. T., et al. 5-HT4 receptor-mediated neuroprotection and neurogenesis in the enteric nervous system of adult mice. Journal of Neuroscience. 2009; 29(31): 9683-9699.

14. Matini P., Mayer B., Faussone-Pellegrini M. S. Neurochemical differentiation of rat enteric neurons during pre-and postnatal life. Cell and tissue research. 1997; 288 (1): 11-23.

15. Nagy N., Goldstein A. M. Enteric nervous system development: A crest cell’s journey from neural tube to colon. Seminars in Cell & Developmental Biology. Academic Press.; 2017.

16. Pácha J. Development of intestinal transport function in mammals. Physiological reviews. 2000; 80(4): 1633-1667.

17. Silva A. T., et al. Neural progenitors from isolated postnatal rat myenteric ganglia: expansion as neurospheres and differentiation in vitro. Brain research. 2008; 1218: 47-53.

18. Skinner S. A., O'Brien P. E. The microvascular structure of the normal colon in rats and humans. Journal of Surgical Research. 1996; 61(2): 482-490.

19. Young H. M., Bergner A. J., Müller T. Acquisition of neuronal and glial markers by neural crest-derived cells in the mouse intestine. Journal of Comparative Neurology. 2003; 456(1): 1-11.