Функциональная морфология иммунных структур селезенки при действии повреждающих факторов

В последние годы существенно вырос интерес к изучению морфофункциональных особенностей органов иммунной системы. Иммунная система вносит существенный вклад в процессы гомеостаза и поддержания здоровья организма. Иммунитет определяет состояние устойчивости организма к инфекционным факторам. При этом, особый интерес представляет селезенка как иммунный орган, поскольку иммунная система человека и животных является одной из наиболее чувствительных систем организма, быстро реагирующей на любые воздействия. В статье представлен обзор литературы, посвященный современным представлениям о морфофункциональной организации селезенки в связи с выполняемыми функциями, а также влиянию повреждающих факторов на изменения морфофункциональных показателей компонентов селезенки.

1. Алакаева И.Б., Непокульчицкая Н.В., Самсыгина Г.А., Высоцкая Т.А. Особенности гемопоэза во внутриутробном периоде и влияние на него врожденных инфекций. Педиатрия. Журнал им. Г.Н. Сперанского. 2009;87(4):122–4

2. Вишневская Т.Я., Ильгеев С.Т. Селезенка собаки и ее артерии. Известия Оренбургского государственного аграрного университета. 2004;4(4):150–1

3. Евлахова Л.А., Чава С.В., Акыева Н.К. Структурные особенности белой пульпы селезенки у мышей после радиационного воздействия низкой интенсивности. Морфологические ведомости. 2013;(2):98–100

4. Ильина Л.Ю., Козлов В.А., Сапожников С.П., Гераев РА. Реакция лимфоидной ткани селезенки белых мышей на амилоидогенез. Acta Medica Eurasica. 2020;(3):30–6 doi: 10.47026/2413-4864-2020-3-30-36

5. Капитонова М.Ю., Краюшкин А.И., Рябикина А.И., Демидович И.Л., Шараевская М.В., Нестерова А.А. Возрастная гистофизиология белой пульпы в раннем постнатальном онтогенезе. Успехи современного естествознания. 2008;12(1):80–1

6. Кварацхелия А.Г., Клочкова С.В., Никитюк Д.Б., Алексеева Н.Т. Морфологическая характеристика тимуса и селезенки при воздействии факторов различного происхождения. Журнал анатомии и гистопатологии. 2016;5(3):77–83 doi: 10.18499/2225-7357-2016-5-3-77-83.

7. Любаева Е.В., Маркова В.И., Ваньков В.А., Севрюгина Г.А. Система гемоциркуляции в селезенке человека: открытая или закрытая? Морфологические ведомости. 2018;26(1):38–41 doi: 10.20340/mv-mn.18(26).01.38-41.

8. Сапин М.Р., Никитюк Д.Б. Иммунная система, стресс и иммунодефицит-М.: АПП Джангар; 2000

9. Сапин М.Р., Этинген Л.Е. Иммунная система человека. М. 1996

10. Ткачук Е.А., Мартынович Н.Н. Возрастные особенности кроветворной и иммунной систем у детей и подростков. Методика исследования и семиотика нарушений: учебное пособие для студентов. Иркутск: ИГМУ; 2020

11. Убайдуллаева В.У., Фаязов А.Ж., Туляганов Д.Б., Вервекина Т.А., Камилов У.Р. Морфологические изменения во внутренних органах у лабораторных животных в эксперименте при электротравме. Вестник экстренной медицины. 2019;12(1):54–61

12. Федоровская Н.С., Железнов Л.М., Зайцев В.Б., Дьяконов Д.А., Коледаева Е.В. Морфометрическая характеристика гистоархитектоники селезенки человека. Морфология. 2020;157(1):41–7 doi: 10.34922/AE.2020.157.1.007.

13. Чава С.В., Буклис Ю.В. Структурные характеристики иммунных образований селезенки мышей после воздействия радиационного фактора низкой интенсивности. Морфологические ведомости. 2011;(4):65–8

14. Al'fonsova EV. Functional morphology of conjunctive tissue stroma of spleen in the age aspect. AdvGerontol. 2012;25(3):415-21.

15. Almenar S, Rios-Navarro C, Ortega M, Molina P, Ferrandez-Izquierdo A, Ruiz-Sauri A. Anatomy, immunohistochemistry, and numerical distribution of human splenic microvessels. Annals of Anatomy - Anatomischer Anzeiger. 2019 Jul;224:161–71. doi: 10.1016/j.aanat.2019.05.004

16. Asaro RJ, Cabrales P. Red Blood Cells: Tethering, Vesiculation, and Disease in Micro-Vascular Flow. Diagnostics (Basel). 2021 May 27;11(6):971. doi: 10.3390/diagnostics11060971

17. Avilova O, Marakushin D, Nakonechna O, Gargin V. Microscopic features of the spleen under the influence of Laproxides. Georgian Med News. 2018 Feb;(Issue):163-7.

18. Bajénoff M, Narni-Mancinelli E, Brau F, Lauvau G. Visualizing Early Splenic Memory CD8+ T Cells Reactivation against Intracellular Bacteria in the Mouse. Fritz JH, editor. PLoS ONE. 2010 Jul 12;5(7):e11524.

19. Bellinger DL, Lorton D. Autonomic regulation of cellular immune function. Auton Neurosci. 2014 May;182:15-41. doi: 10.1016/j.autneu.2014.01.006.

20. Bellomo A, Mondor I, Spinelli L, Lagueyrie M, Stewart BJ, et al. Reticular Fibroblasts Expressing the Transcription Factor WT1 Define a Stromal Niche that Maintains and Replenishes Splenic Red Pulp Macrophages. Immunity. 2020 Jul 14;53(1):127-142.e7. doi: 10.1016/j.immuni.2020.06.008.

21. Bing SJ, Kim MJ, Park E, Ahn G, Kim DS, Ko RK, et al. 1,2,3,4,6-Penta-O-galloyl-.BETA.-D-glucose Protects Splenocytes against Radiation-Induced Apoptosis in Murine Splenocytes. Biological and Pharmaceutical Bulletin. 2010;33(7):1122–7. doi: 10.1248/bpb.33.1122.

22. Blue J, Weiss L. Species variation in the structure and function of the marginal zone--an electron microscope study of cat spleen. Am J Anat. 1981 Jun;161(2):169-87. doi: 10.1002/aja.1001610204.

23. Cesta MF. Normal structure, function, and histology of the spleen. ToxicolPathol. 2006;34(5):455-65. doi: 10.1080/01926230600867743.

24. Chadburn A. The spleen: anatomy and anatomical function. SeminHematol. 2000 Jan;37(1 Suppl 1):13-21. doi: 10.1016/s0037-1963(00)90113-6.

25. Choe J, Li L, Zhang X, Gregory CD, Choi YS. Distinct role of follicular dendritic cells and T cells in the proliferation, differentiation, and apoptosis of a centroblast cell line, L3055. J Immunol. 2000 Jan 1;164(1):56-63. doi: 10.4049/jimmunol.164.1.56.

26. Desanti GE, Cumano A, Golub R. Identification of CD4int progenitors in mouse fetal spleen, a source of resident lymphoid cells. J Leukoc Biol. 2008 May;83(5):1145-54. doi: 10.1189/jlb.1107755.

27. Everds NE, Reindel J, Werner J, Craven WA. Variability of Spleen and Mesenteric Lymph Node in Control Cynomolgus Monkeys (Macaca fascicularis) from Nonclinical Safety Studies: A Retrospective Assessment. Toxicologic Pathology. 2018 Dec 18;47(1):53–72. doi: 10.1177/0192623318809073.

28. Faller A. Splenic architecture reflected in the connective tissue structure of the human spleen. Experientia. 1985 Feb 15;41(2):164-7. doi: 10.1007/BF02002609.

29. Fu YX, Huang G, Wang Y, Chaplin DD. Lymphotoxin-alpha-dependent spleen microenvironment supports the generation of memory B cells and is required for their subsequent antigeninduced activation. J Immunol. 2000 Mar 1;164(5):2508-14. doi: 10.4049/jimmunol.164.5.2508.

30. Fujiyama S, Nakahashi-Oda C, Abe F, Wang Y, Sato K, Shibuya A. Identification and isolation of splenic tissue-resident macrophage subpopulations by flow cytometry. Int Immunol. 2019 Feb 6;31(1):51-56. doi: 10.1093/intimm/dxy064.

31. Guisado Vasco P, Villar Rodríguez JL, Ibañez Martínez J, González Cámpora R, Galera Davidson H. Immunohistochemical organization patterns of the follicular dendritic cells, myofibroblasts and macrophages in the human spleen--new considerations on the pathological diagnosis of splenectomy pieces. Int J Clin Exp Pathol. 2009 Dec 10;3(2):189-202.

32. Hayasaka H, Taniguchi K, Fukai S, Miyasaka M. Neogenesis and development of the high endothelial venules that mediate lymphocyte trafficking. Cancer Science. 2010 Jul 23;101(11):2302–8. doi: 10.1111/j.1349-7006.2010.01687.x

33. Heusermann U. Morphologie und Funktion der menschlichenMilz. Enzymhistochemische und elektronenmikroskopischeUntersuchungen der lienalenLymphgefässe, Nerven und Bindegewebsstrukturen [Morphology and function of the human spleen. Enzyme histochemical and electron microscopy studies of the splenic lymphatic vessels, nerves and connective tissue structures]. VeroffPathol. 1988;129:1-165. German.

34. Kim CH, Liu Q. Periarteriolar stroma cells guide T cells from the red to the white pulp in the spleen. Cell Mol Immunol. 2020 Oct;17(10):1019-1021. doi: 10.1038/s41423-020-0506-8.

35. Kraal G, Mebius R. New insights into the cell biology of the marginal zone of the spleen. Int Rev Cytol. 2006;250:175-215. doi: 10.1016/S0074-7696(06)50005-1.

36. Laukova M, Vargovic P, Rokytova I, Manz G, Kvetnansky R. Repeated Stress Exaggerates Lipopolysaccharide-Induced Inflammatory Response in the Rat Spleen. CellMolNeurobiol. 2018 Jan;38(1):195-208. doi: 10.1007/s10571-017-0546-5. Epub 2017 Sep 7. PMID: 28884416.

37. Lewis SM, Williams A, Eisenbarth SC. Structure and function of the immune system in the spleen. SciImmunol. 2019 Mar 1;4(33):eaau6085. doi: 10.1126/sciimmunol.aau6085.

38. MacLennan IC, Liu YJ, Oldfield S, Zhang J, Lane PJ. The evolution of B-cell clones. Curr Top Microbiol Immunol. 1990;159:37-63. doi: 10.1007/978-3-642-75244-5_3.

39. Maddaly R, Pai G, Balaji S, Sivaramakrishnan P, Srinivasan L, Sunder SS, Paul SF. Receptors and signaling mechanisms for B-lymphocyte activation, proliferation and differentiation--insights from both in vivo and in vitro approaches. FEBS Lett. 2010 Dec 15;584(24):4883-94. doi: 10.1016/j.febslet.2010.08.022.

40. Martinez-Pomares L, Hanitsch LG, Stillion R, Keshav S, Gordon S. Expression of mannose receptor and ligands for its cysteine-rich domain in venous sinuses of human spleen. Lab Invest. 2005 Oct;85(10):1238-49. doi: 10.1038/labinvest.3700327.

41. Mebius RE, Kraal G. Structure and function of the spleen. Nat Rev Immunol. 2005 Aug;5(8):606-16. doi: 10.1038/nri1669.

42. Pizzi M, Chaviano F, Rugge M, Orazi A. A lucky mistake: the splenic glands of Marcello Malpighi. Hum Pathol. 2018 Feb;72:191-195. doi: 10.1016/j.humpath.2017.11.007.

43. Riedel R, Addo R, Ferreira-Gomes M, Heinz GA, Heinrich F, Kummer J, et al. Discrete populations of isotype-switched memory B lymphocytes are maintained in murine spleen and bone marrow. Nature Communications. 2020 May 22;11(1). doi: 10.1038/s41467-020-16464-6.

44. Riva MA, Ferraina F, Paleari A, Lenti MV, Di Sabatino A. From sadness to stiffness: the spleen's progress. Intern Emerg Med. 2019 Aug;14(5):739-743. doi: 10.1007/s11739-019-02115-2.

45. Rokytová I, Mravec B, Lauková M, Vargovič P. Effect of rapamycin on repeated immobilization stress-induced immune alterations in the rat spleen. J Neuroimmunol. 2020 Jun 25;346:577309. doi: 10.1016/j.jneuroim.2020.577309. Epub ahead of print. PMID: 32645638.

46. Sasou S. The perifollicular zone of the spleen as a distributor and filter of blood components. J Clin Exp Hematop. 2021 Mar 18;61(1):58-60. doi: 10.3960/jslrt.20038.

47. Steiniger B, Barth P, Herbst B, Hartnell A, Crocker PR. The species-specific structure of microanatomical compartments in the human spleen: strongly sialoadhesin-positive macrophages occur in the perifollicular zone, but not in the marginal zone. Immunology. 1997 Oct;92(2):307-16. doi: 10.1046/j.1365-2567.1997.00328.x.

48. Steiniger BS. Human spleen microanatomy: why mice do not suffice. Immunology. 2015 Jul;145(3):334–46. doi: 10.1111/imm.12469.

49. Sun Y, Blink SE, Chen JH, Fu YX. Regulation of follicular dendritic cell networks by activated T cells: the role of CD137 signaling. J Immunol. 2005 Jul 15;175(2):884-90. doi: 10.4049/jimmunol.175.2.884.

50. Tarlinton D, Light A, Metcalf D, Harvey RP, Robb L. Architectural defects in the spleens of Nkx2-3-deficient mice are intrinsic and associated with defects in both B cell maturation and T celldependent immune responses. J Immunol. 2003 Apr 15;170(8):4002-10. doi: 10.4049/jimmunol.170.8.4002.

51. Thoman ML. The pattern of T lymphocyte differentiation is altered during thymic involution. Mech Ageing Dev. 1995 Aug 8;82(2-3):155-70. doi: 10.1016/0047-6374(95)01597-s.

52. Timens W, Poppema S. Lymphocyte compartments in human spleen. An immunohistologic study in normal spleens and uninvolved spleens in Hodgkin's disease. Am J Pathol. 1985 Sep;120(3):443–54. PMID: 3898859.

53. Turner VM, Mabbott NA. Influence of ageing on the microarchitecture of the spleen and lymph nodes. Biogerontology. 2017 Oct;18(5):723-738. doi: 10.1007/s10522-017-9707-7.

54. Umbetov T, Berdalinova A, Koyshybayev A, Umbetova K, Sultanova G. Structure of the spleen at chronic intoxication of the organism by sodium tetraborate and after intoxication. Georgian Med News. 2016 May;(254):81-7.

55. Vamvakopoulos NC, Fukuhara K, Patchev V, Chrousos GP. Effect of single and repeated immobilization stress on the heat shock protein 70/90 system of the rat: glucocorticoid-independent, reversible reduction of Hsp90 in the liver and spleen. Neuroendocrinology. 1993 Jun;57(6):1057-65. doi: 10.1159/000126471.

56. Veerman AJ, van Ewijk W. White pulp compartments in the spleen of rats and mice. A light and electron microscopic study of lymphoid and nonlymphoid celltypes in T- and B-areas. Cell Tissue Res. 1975;156(4):417-41. doi: 10.1007/BF00225103.

57. Weiss L. The red pulp of the spleen: structural basis of blood flow. ClinHaematol. 1983 Jun;12(2):375-93. PMID: 6352110