Preview

Журнал анатомии и гистопатологии

Расширенный поиск

Фенотипический полиморфизм клеток Купфера печени крыс в норме

https://doi.org/10.18499/2225-7357-2019-8-3-35-39

Полный текст:

Аннотация

Цель исследования – оценить иммунофенотип резидентных макрофагов печени, клеток Купфера, у крыс в норме.

Материал и методы. В работе использовали самцов крыс Вистар (n=6), у которых под эфирным наркозом забирали фрагмент срединной доли печени. Полученный материал фиксировали в жидком азоте, после чего готовили криосрезы толщиной 5–7 мкм. На гистологических препаратах с помощью набора антителами выявляли экспрессию ряда маркеров макрофагов: CD68, CD206, CD 163, CD86 после первых антител срезы докрашивали антителами, конъюгированными с FITC, ядра клеток выявляли с помощью DAPI, полученные препараты изучали с помощью флуоресцентного микроскопа.

Результаты. При анализе экспрессии CD68 в печени крыс, установлено, что в норме примерно 20% клеток в поле зрения приходится на CD68+ клетки, что согласуется с нашими более ранними исследованиями. Количество CD163+ и CD206+ клеток совпадало с количеством CD68+ макрофагов, в то время как CD86+ макрофагов было значительно меньше.

Выводы. В нормальных условиях популяция резидентных макрофагов печени крыс представлена клетками с выраженной экспрессией CD68, CD163 и CD206. Большое количество CD163+ и CD206+ макрофагов позволяет заключить, что клетки Купфера близки к М2-прорегенераторным фенотипу. Однако выявление CD86+ резидентных макрофагов свидетельствует о наличии М1-макрофагов, или о присутствии в печени крыс в норме макрофагов с промежуточным между М1и М2-фенотипом. Выявленное высокое содержание в печени макрофагов, экспрессирующих CD163 и CD206, свидетельствует не только о прорегенераторных свойствах клеток Купфера, но также о тесной связи макрофагов с функциями печени, поскольку указанные рецепторы участвует в утилизации гемоглобина и ряда гормонов.

Об авторах

А. В. Ельчанинов
ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии им. акад. В. И. Кулакова» Минздрава России
Россия

Ельчанинов Андрей Владимирович

ул. Академика Опарина, 4, Москва, 117198



А. В. Лохонина
ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии им. акад. В. И. Кулакова» Минздрава России; ФГАОУ ВО «Российский университет дружбы народов»
Россия
Москва


А. В. Макаров
ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии им. акад. В. И. Кулакова» Минздрава России; ФГБОУ ВО «Российский национальный исследовательский медицинский университет им. Н. И. Пирогова» Минздрава России
Россия
Москва


П. А. Вишнякова
ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии им. акад. В. И. Кулакова» Минздрава России
Россия
Москва


Е. Ю. Кананыхина
ФГБНУ «Научно-исследовательский институт морфологии человека»
Россия
Москва


М. П. Никитина
ФГБНУ «Научно-исследовательский институт морфологии человека»
Россия
Москва


М. В. Гринберг
ФГАОУ ВО «Российский университет дружбы народов»
Россия
Москва


А. В. Быков
ФГБОУ ВО «Российский национальный исследовательский медицинский университет им. Н. И. Пирогова» Минздрава России
Россия
Москва


И. Г. Чарыева
ФГБОУ ВО «Российский национальный исследовательский медицинский университет им. Н. И. Пирогова» Минздрава России
Россия
Москва


Г. Б. Большакова
ФГБНУ «Научно-исследовательский институт морфологии человека»
Россия
Москва


Т. Х. Фатхудинов
ФГАОУ ВО «Российский университет дружбы народов»; ФГБНУ «Научно-исследовательский институт морфологии человека»
Россия
Москва


Список литературы

1. Лохонина А.В., Покусаев А.С., Арутюнян И.В., Ельчанинов А.В., Макаров А.В., Еремина И.З., Суровцев В.В., Большакова Г.Б., Гольдштейн Д.В., Фатхудинов Т.Х. Характеристика иммунофенотипа резидентных макрофагов печени и профиля экспрессируемых генов. Клиническая и экспериментальная морфология. 2018; 1(25): 49–60

2. Лохонина А.В., Ельчанинов А.В., Арутюнян И.В., Покусаев А.С., Макаров А.В., Еремина И.З., Суровцев В.В., Большакова Г.Б., Гольдштейн Д.В., Фатхудинов Т.Х. Морфофункциональная характеристика макрофагов эмбрионального и моноцитарного происхождения. Гены и Клетки. 2018; 13(2): 56–62 doi: 10.23868/201808020

3. Chen L, Flies DB. Molecular mechanisms of T cell co-stimulation and co-inhibition. Nat. Rev. Immunol. 2013; 13: 227–42. doi: 10.1038/nri3405

4. Elchaninov AV, Fatkhudinov TK, Usman NY, et al. Dynamics of macrophage populations of the liver after subtotal hepatectomy in rats. BMC Immunol. 2018; 19: 23. doi: 10.1186/s12865-0180260-1.

5. Fabriek BO, van Bruggen R, Deng DM, et al. The macrophage scavenger receptor CD163 functions as an innate immune sensor for bacteria. Blood. 2009; 113: 887–92. doi: 10.1182/blood-2008-07167064

6. Ginhoux F, Greter M, Leboeuf M, et al. Fate map analysis reveals that adult mice derive from primitive macrophages. Science. 2010; 330: 841–5. doi: 10.1126/science.1194637

7. Gottfried E, Kunz-Schughart LA, Weber A, et al. Expression of CD68 in Non-Myeloid Cell Types. Scand. J. Immunol. 2008; 67: 453–63. doi: 10.1111/j.1365-3083.2008.02091.x

8. Guilliams M, Scott CL. Does niche competition determine the origin of tissue-resident macrophages? Nat. Rev. Immunol. 2017; 17: 451–60. doi: 10.1038/nri.2017.42

9. Holness CL, Simmons DL. Molecular cloning of CD68, a human macrophage marker related to lysosomal glycoproteins. Blood. 1993; 81: 1607–13.

10. Lokhonina A, Elchaninov A, Fatkhudinov T, et al. Activated Macrophages of Monocytic Origin Predominantly Express Proinflammatory Cytokine Genes, Whereas Kupffer Cells Predominantly Express Anti-Inflammatory Cytokine Genes. Biomed Res. Int. 2019; 2019: 1–13. doi: 10.1155/2019/3912142

11. Malyshev I, Malyshev Y. Current Concept and Update of the Macrophage Plasticity Concept: Intracellular Mechanisms of Reprogramming and M3 Macrophage “Switch” Phenotype. Biomed Res. Int. 2015; 2015: 1–22. doi: 10.1155/2015/341308

12. Martinez FO, Gordon S. The M1 and M2 paradigm of macrophage activation: time for reassessment. F1000Prime Rep. 2014; 6: 13. doi: 10.12703/P6-13

13. Martinez-Pomares L. The mannose receptor. J. Leukoc. Biol. 2012; 92: 1177–86. doi: 10.1189/jlb.0512231

14. Murray PJ, Allen JE, Biswas SK, et al. Macrophage Activation and Polarization: Nomenclature and Experimental Guidelines. Immunity. 2014; 41: 14–20. doi: 10.1016/j

15. Orecchioni M, Ghosheh Y, Pramod AB, Ley K. Macrophage Polarization: Different Gene Signatures in M1(LPS+) vs. Classically and M2(LPS–) vs. Alternatively Activated Macrophages. Front. Immunol. 2019; 10: 1084. doi: 10.3389/fimmu.2019.01084

16. Perdiguero EG. Development and maintainance of resident macrophages Elisa. Nat Immunol. 2016; 17: 2–8.

17. Perdiguero GE, Klapproth K, Schulz C, et al. Tissueresident macrophages originate from yolksacderived erythro-myeloid progenitors. Nature. 2015; 518: 547–51. doi: 10.1038/nature13989

18. Theret M, Mounier R, Rossi F. The origins and non-canonical functions of macrophages in development and regeneration. Development. 2019; 146: dev156000. doi: 10.1242/dev.156000


Рецензия

Для цитирования:


Ельчанинов А.В., Лохонина А.В., Макаров А.В., Вишнякова П.А., Кананыхина Е.Ю., Никитина М.П., Гринберг М.В., Быков А.В., Чарыева И.Г., Большакова Г.Б., Фатхудинов Т.Х. Фенотипический полиморфизм клеток Купфера печени крыс в норме. Журнал анатомии и гистопатологии. 2019;8(3):35-39. https://doi.org/10.18499/2225-7357-2019-8-3-35-39

For citation:


El'chaninov A.V., Lokhonina A.V., Makarov A.V., Vishnyakova P.A., Kananykhina E.Yu., Nikitina M.P., Grinberg M.V., Bykov A.V., Charyeva I.G., Bol'shakova G.B., Fatkhudinov T.K. Phenotypic Polymorphism of Normal Rat Liver Kupffer Cells. Journal of Anatomy and Histopathology. 2019;8(3):35-39. (In Russ.) https://doi.org/10.18499/2225-7357-2019-8-3-35-39

Просмотров: 519


Creative Commons License
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.


ISSN 2225-7357 (Print)