Preview

Журнал анатомии и гистопатологии

Расширенный поиск

Экспрессия даблкортина в обонятельной луковице и ростральном потоке у крыс инфантильного возраста после воздействия нейротоксина

https://doi.org/10.18499/2225-7357-2018-7-4-50-55

Полный текст:

Аннотация

Целью работы явилось изучение изменения численной плотности нейробластов в обонятельной луковице и ростральном миграционном потоке у крыс после введения нейротоксина в инфантильном возрасте.

Материал и методы. Изучено распределение DCX, маркера незрелых нейронов, в обонятельных луковицах и ростральном потоке у крыс 30-, 60-, 90-, 180-суточного возраста для выявления динамики его экспрессии в эволютивном периоде онтогенеза. Моделирование нейротоксического воздействия осуществлялось трехкратным введением капсаицина на 30–32-е сут жизни в суммарной дозе 120 мг/кг. Материал для исследования забирали на 15-, 30- и 60-е сут эксперимента. Маркер выявляли на парасагиттальных парафиновых срезах с учетом слоев обонятельной луковицы. Определяли численную плотность DCX+ нейронов (шт/мм2) и их долю в общем количестве клеток.

Результаты. Установлены нормативные возрастные показатели численной плотности незрелых нейронов и их доли в популяции клеток, а также аналогичные показатели на протяжении двух месяцев после токсического воздействия. Распределение DCX-позитивных клеток имеет топографические и возрастные особенности. Введение токсических доз капсаицина вызывает массовую гибель зрелых нейронов. В ответ на это развивается компенсаторная реакция, проявляющаяся активацией нейрогенеза в стволовых нишах мозга, результатом чего является повышение численной плотности нейробластов рострального потока.

Выводы. Активизация нейрогенеза при нейродегенерации вызывает увеличение количества DCX+ нейрональных предшественников в обонятельной луковице уже через 30 сут после воздействия и сохранение высоких показателей до конца наблюдения.

Об авторах

Д. А. Пожилов
ФГБОУ ВО «Ярославский государственный медицинский университет»
Россия

Пожилов Дмитрий Алексеевич – ассистент кафедры анатомии человека

150000  Ярославль,  ул.  Революционная  5

 



Т. А. Румянцева
ФГБОУ ВО «Ярославский государственный медицинский университет»
Россия

Румянцева Татьяна Анатольевна – д-р мед. наук, профессор, зав. кафедрой анатомии человека

150000 Ярославль, ул. Революционная 5

 



В. Е. Варенцов
ФГБОУ ВО «Ярославский государственный медицинский университет»
Россия

Варенцов Вячеслав Евгеньевич – ассистент кафедры анатомии человека

150000 Ярославль, ул. Революционная 5

 



А. В. Москаленко
ФГБОУ ВО «Ярославский государственный медицинский университет»
Россия

Москаленко Александр Владимирович – студент лечебного факультета

150000 Ярославль, ул. Революционная 5

 



Список литературы

1. Гомазков О. А. Нейрогенез как организующая функция зрелого мозга. Достаточно ли доказательств? Успехи современной биологии. 2016; 136 (3): 227–246.

2. Западнюк И. П., Западнюк В. И., Захария Е. А., Западнюк Б. В. Лабораторные животные. Разведение, содержание, использование в эксперименте. Киев: Вища школа; 1983. 383.

3. Коржевский Д. Э., Карпенко М. Н., Кирик О. В. Белки, ассоциированные с микротрубочками, как показатели дифференцировки и функционального состояния нервных клеток. Морфология. 2011; 139 (1): 13–21.

4. Петухова Е. О., Мухамедшина Я. О., Васильева О. Ю., Аксенова Л. Ю., Соловьева В. В., Гагарина Е. Е., Ризванов А. А., Зефиров А. Л., Исламов Р. Р., Мухамедьяров М. А. Стимулирование нейрогенеза в гиппокампе при болезни Альцгеймера. Гены и клетки. 2015; 10 (4): 54– 59.

5. Пожилов Д. А., Москаленко А. В., Варенцов В. Е.DCX-позитивные клетки в обонятельной луковице и в ростральном миграционном потоке у крыс разного возраста. Морфология. 2018; 153 (3): 221–222.

6. Румянцева Т. А. Клеточный состав спинномозгового узла белой крысы после неонатального введения капсаицина. Морфология. 2000; 118 (5): 22–25.

7. Cho J. H., Kim A. H., Lee S., Lee Y., Lee W. J., Chang S. C., Lee J. Sensitive neurotoxicity assessment of bisphenol A using double immunocytochemistry of DCX and MAP2. Archives of Pharmacal Research. 2018. DOI: 10.1007/s12272-018-1077-4.

8. Friocourt G., Koulakoff A., Chafey P. et. al. Doublecortin functions at the extremities of growing neuronal processes. Cereb. Cortex. 2003; 13(6): 620–626.

9. Guide for the Care and Use of Laboratory Animals: Eighth Edition. The National Academies Press. Washington, DC; 2011. 248.

10. Royet J.-P. A re-estimation of the number of glomeruli and mitral cells in the olfactory bulb. Brain Research. 1998; 788: 35–42.

11. Wille M. The proteome profiles of the olfactory bulb of juvenile, adult and aged rats – an ontogenetic study. Proteome Science. 2015; 13: 8.

12. Zuo Y., Wang J., Enkhjargal B., Doycheva D., Yan X., Zhang J. H., Liu F. Neurogenesis changes and the fate of progenitor cells after subarachnoid hemorrhage in rats. Experimental Neurology. 2019; 311: 274–284. DOI: 10.1016/j.expneurol.2018.10.011


Рецензия

Для цитирования:


Пожилов Д.А., Румянцева Т.А., Варенцов В.Е., Москаленко А.В. Экспрессия даблкортина в обонятельной луковице и ростральном потоке у крыс инфантильного возраста после воздействия нейротоксина. Журнал анатомии и гистопатологии. 2018;7(4):50-55. https://doi.org/10.18499/2225-7357-2018-7-4-50-55

For citation:


Pozhilov D.A., Rumyantseva T.A., Varentsov V.E., Moskalenko A.V. Doublecortin Expression in the Olfactory Bulb and Rostral Stream in Infantile Rats after Exposure to Neurotoxin. Journal of Anatomy and Histopathology. 2018;7(4):50-55. (In Russ.) https://doi.org/10.18499/2225-7357-2018-7-4-50-55

Просмотров: 251


Creative Commons License
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.


ISSN 2225-7357 (Print)