Karyometric and electron microscopic studies of dark and light cells of the adrenal cortex in mammals

The purpose of this study is a comparative study of dark and light cells of cortical parenchyma of the adrenal glands in mammals using light and electron microscopy. Material and methods. Cariometric and electron microscopic studies of the adrenal glands of 9 mammalian species have been carried out: Vulpes vulpes (fox), Vulpes lagopus (arctic fox), Canis familiaris (dog), Мartes zibellina (sable), Mustela vison (mink), Enhydra lutris (sea ape); Castor fiber (river beaver); Callorhinus ursinus (fur seal); Ovis aries (sheep). Serial paraffin sections were stained with hematoxylin and eosin, iron hematoxylin, Heidenheim azan, the PAS-reaction was used, the color of the trichrome-PAS and the tetrachromium-PAS. RNA was detected by the reaction of Brashe and gallocyanin by Einarsson. For the detection of lipids, frozen sections were stained with Sudan III + IV, Black Sudan. The number of dark and light cells in the cortex of the adrenal mink in different seasons was determined. On electron micrographs, the amount of lipid droplets and mitochondria in the fascicle of the adrenal cortex was counted. Results. In the cortex of the adrenal glands of mammals, dark and light cells are present. Dark cells, as far as accumulation of sudanophilic substances are converted into light cells, which with further accumulation of lipids undergo destructive changes. Also found are the dark dying cells of the adrenal cortex, characterized by densification of the cytoplasm, pycnosis of nuclei, accumulation of yellow-brown pigment. Dark cells have larger nuclei, give more intense reaction to RNA and ketosteroids and are more active secretory cells compared to light adrenocorticocytes. Electron microscopy in dark cells reveals a large number of mitochondria and a significant amount of lipid droplets are present. Light cells contain many lipid inclusions and few mitochondria.

надпочечник, темные и светлые клетки, липидные капли, митохондрии, площадь ядер, ядерно-цитоплазматическое отношение, adrenal gland, dark and light cells, lipid drops, mitochondria, area of nuclei, nuclear-cytoplasmic ratio

1. Алексеева Н. Т., Кварацхелия А. Г. Модифицирующее действие антиоксиданта α-токоферола на надпочечные железы хронически алкоголизированных крыс. Международный журнал прикладных и фундаментальных исследований. 2013; 5: 156-158.

2. Грибанов О. Г. Возрастная динамика морфометрических показателей коркового вещества надпочечников пятнистого оленя. Вестник Алтайского государственного аграрного университета. 2013; 8(106): 89-93.

3. Кварацхелия А. Г., Клочкова С. В., Никитюк Д. Б., Алексеева Н. Т. Структурная реорганизация коры надпочечников при пероральной принудительной алкогольной интоксикации в сочетании с введением витамина Е. Журнал анатомии и гистопатологии. 2014; 3(1): 27-32.

4. Кисели Д. Практическая микротехника и гистохимия. Будапешт: Изд-во АН Венгрии; 1962. 382.

5. Кольтюкова Н. В. Морфологические изменения надпочечника при адаптации к многократным индивидуально дозированным физическим нагрузкам. Морфология. 1997; 111(2): 79-83.

6. Кузнецов А. В., Шевченко Б. П. Морфометрия надпочечников оренбургской пуховой козы в постнатальном онтогенезе. Известия Оренбургского государственного аграрного университета. 2005; 2(6): 30-32.

7. Лакин Г. Ф. Биометрия. М.; 1980. 291.

8. Магомедов Г.-Г. Р., Атагимов М. З. Морфология надпочечника в постнатальном онтогенезе у овец дагестанской горной породы. Известия Оренбургского государственного аграрного университета. 2010; 29: 101-103.

9. Снедекор Дж. У. Статистические методы в применении к исследованиям в сельском хозяйстве и биологии. М.; 1961. 503.

10. Торгун П. М. Структура и гистофункциональные показатели коры надпочечника норки. Доклады Академии наук СССР. 1967; 174(4): 961-964.

11. Урбах В. Ю. Биометрические методы. М.; 1964. 415.

12. Ray P. K. Stabilization of the remaining adrenal gland following unilateral adrenalectomy. A light- and electron-microscopic study in the rat. Acta Anat (Basel). 1980; 108(2): 208-225.

13. Sricharoenvej S., Boonprasop S., Lanlua P., Piyawinijwong S., Niyomchan A. Morphological and microvascular changes of the adrenal glands in streptozotocin-induced long-term diabetic rats. Ital J Anat Embryol. 2009; 114(1): 1-10.

14. Buzueva I. I., Filyushina E. E., Shmerling M. D., Markel A. L., Yakobson G. S. Chromogranin location in the adrenal glands of ISIAH rats. Bull Exp Biol Med. 2013; 154(3): 393-539.

15. Vukovic S., Lucic H., Zivkovic A., Duras Gomercic M., Gomercic T., Galov A. Histological structure of the adrenal gland of the bottlenose dolphin (Tursiops truncatus) and the striped dolphin (Stenella coeruleoalba) from the Adriatic Sea. Anat Histol Embryol. 2010; 39(1): 59-66. doi: 10.1111/j.1439-0264.2009.00981.x