МОРФОФУНКЦИОНАЛЬНЫЕ ПРЕОБРАЗОВАНИЯ В РОГОВИЦЕ КРОЛИКА ПРИ ОЖОГОВОМ ПОВРЕЖДЕНИИ ЛИМБА

Целью исследования явилось экспериментальное изучение морфологических изменений роговицы кроликов при различной площади термического повреждения лимба роговицы.

Материал и методы. Работа проведена на 150 глазах 75 кроликов, 60 из которых составили опытную группу и 15 – контрольную. Повреждение лимба осуществляли путем диатермокоагуляции с использованием аппарата «диатермокоагулятор глазной ДК-1». Кроликов выводили из опыта через 3, 7, 15, 30 и 60 суток. Репаративный гистогенез в роговице глаза кролика изучали с использованием обзорных гистологических и иммуногистохимических методов.

Результаты. Результаты исследования показали, что характер репаративных процессов в переднем эпителии роговицы существенно различается в зависимости от степени повреждения лимбальной зоны. При повреждении ¼ площади лимба в переднем эпителии роговицы происходит активизация митотической активности эпителия в сохраненной области лимба. При повреждении ½ площади лимба эти изменения более выражены и сохраняются более длительное время. При поражении ¾ площади лимба и всего лимба возникают выраженные деструктивные изменения переднего эпителия роговицы, утолщение и разволокнение стромы, нарастание конъюнктивы на роговицу.

Заключение. Повреждение четверти и половины лимба сопровождается активацией репаративной способности неповрежденного участка лимба, приводящей к эпителизации поврежденных участков роговицы. При повреждении более половины лимбальной области активизация пролиферативной активности эпителиоцитов лимбальной зоны оказывается недостаточной для полного восстановления повреждения роговицы. При этом регенерация переднего эпителия роговицы происходила как за счет камбиальных клеток неповрежденной части лимба, так и за счет нарастания эпителия конъюнктивы на зону повреждения. Полученные результаты подтверждают значимость лимба в репаративных гистогенезах роговицы.

1. Гололобов В. Г., Гайворовский И. В., Деев Р. В. и др. Репаративная регенерация многослойного эпителия роговицы: биотехнологический потенциал. Клеточная трансплантология и тканевая инженерия. 2008; 3(4): 55–59.

2. Гундорова Р. А., Ченцова Е. В. Клеточные технологии в офтальмологии: 10-летний опыт экспериментальных исследований и перспективы в клинике. Российский офтальмологический журнал. 2008; 1(1): 45–49.

3. Макаров П. В. Осложнение тяжелой ожоговой травмы глаз: патогенез, анализ причин, профилактика и возможные пути оптимизации результатов лечения: автореф. дис… д-ра мед. наук. М.; 2003: 45.

4. Пучковская Н. А., Якименко С. А., Непомнящая В. М. Ожоги глаз. М.: Медицина; 2001: 272.

5. Сухинин М. В. Морфологическая характеристика переднего эпителия роговицы и сосудистого русла конъюнктивы глазного яблока в норме и при механическом повреждении перилимбальной зоны (экспериментальное исследование): автореф. дис. …канд.мед. наук. СПб.; 2011: 18.

6. Сухинин М. В., Гололобов В. Реактивные изменения переднего эпителия роговицы при повреждении ростковой зоны лимба глаза. Фундаментальные проблемы гистологии, гистогенез и регенерация тканей. СПб.: ВМедА; 2004: 136–137.

7. Мухамеджанова К., Сулеева Б. О., Ольшевский И. Е., Адрахимова Д. Б. Трансплантация стволовых клеток лимба при патологии роговицы. Новые технологии в лечении заболевания роговицы: сб. научн. статей. М.; 2004: 490–495.

8. Черныш В. Ф., Шишкин М. М., Березин Р. Д. Пересадка стволовых клеток роговичного эпителия при лечении тяжелых химических ожогов глаза в эксперименте. Офтальмология на рубеже веков: сб. науч. тр. юбил. науч. конф., посвящ. 80-летию проф. В.В. Волкова. СПб.; 2001: 389.

9. Шишкин М. М., Резниченко Н. Н., Сухинин М. В. Значение эффективности пересадки стволовых клеток лимба для лечения птеригиума. Офтальмология на рубеже веков. СПб.; 2001: 397.

10. Foster J. W., Jones R. R., Bippes C. A. et al. Differential nuclear expression of Yap in basal epithelial cells across the cornea and substrates of differing stiffness. Exp Eye Res. 2014; 127(1): 37–41.

11. Huang A. J. W., Tseng S. C. G. Corneal epithelial wound-healing in the absence of limbal epithelium. Invest. Ophthalmol. Vis Sci. 1991; 32(1): 96– 105.

12. Piatigorsky J. Enigma theabundan twatersoluble-cytoplasmic proteins of the cornea: the “refracton” hypothesis. Cornea. 2001; 20(8): 853– 858.

13. Schloetzer-Schrehardt U., Dietrich T., Saito K. et al. Characterization of extracellular matrix components in the limbal epithelial stem cell compartment // Exp. Eye Res. 2007; 85(6): 845–860.

14. Stoiber J., Muss W. H., Pohla-Gubo G. et al. Histopathology of human corneas after amniotic membrane and limbal stem cell transplantation for severe chemical burn. Cornea. 2002; 21(5): 482–489.

15. Wagoner M. D. Chemical injuries of the eye: Current concepts in pathophysiology and therapy. Surv. Ophthalmol. 1997; 41(4): 275–313.