СОСТОЯНИЕ ТУЧНЫХ КЛЕТОК СЛИЗИСТОЙ ОБОЛОЧКИ ТОЩЕЙ КИШКИ МОНГОЛЬСКИХ ПЕСЧАНОК ПОСЛЕ НАЗЕМНОГО МОДЕЛИРОВАНИЯ ФИЗИОЛОГИЧЕСКИХ ЭФФЕКТОВ МИКРОГРАВИТАЦИИ РАЗЛИЧНОЙ ПРОДОЛЖИТЕЛЬНОСТИ

Цель исследования - оценить состояние тучных клеток (ТК) слизистой оболочки тощей кишки монгольских песчанок после наземного моделирования физиологических эффектов микрогравитации различной продолжительности. Материал и методы. Самцов монгольских песчанок подвергали антиортостатическому вывешиванию в течение 12 (n=8) и 30 (n=8) суток по методике Ильина-Новикова в модификации Морей-Холтон. 8 особей составляли группу виварийного контроля. Фрагменты тощей кишки фиксировали и заливали в парафин. Срезы окрашивали толуидиновым синим (рН=4.4). Определяли ферментативную активность хлорацетил эстеразы (ХАЭ). Количество ТК в слизистой оболочке тощей кишки подсчитывали в поле зрения (объектив ×90), с учетом гистотопографии и морфофункционального состояния. Статистическую обработку проводили с помощью программы Stat Soft Statistica, v6.0; при сравнении двух выборок применяли t-критерий Стьюдента для независимых выборок с уровнем значимости p<0.05. Результаты. Моделирование некоторых физиологических эффектов микрогравитации в наземных условиях приводило к снижению численности метахроматичных ТК слизистой оболочки тощей кишки, активизации секреции продуктов биосинтеза, возрастанию абсолютного и относительного содержания в мукозной субпопуляции ХАЭ⁺ ТК. Выводы. Антиортостатическое вывешивание монгольских песчанок вызывало сокращение мукозной субпопуляции ТК тощей кишки, коррелирующее с продолжительностью эксперимента. Усиливалась репопуляция ТК и активизировались процессы образования и созревания секреторных продуктов.

тучные клетки, тощая кишка, монгольские песчанки, антиортостатическое вывешивание, mast cells, jejunum, mongolian gerbils, antiorthostatic hanging

1. Атякшин Д. А., Бухвалов И. Б., Тиманн М. Гистохимия ферментов: методическое пособие. Воронеж: ИПЦ «Научная книга»; 2016. 120.

2. Атякшин Д. А., Быков Э. Г., Ильин Е. А., Пашков А. Н. Тканеспецифичные особенности реакции слизистой тощей кишки монгольских песчанок при воздействии факторов космического полета на биоспутнике «Фотон-М3». Авиакосмическая и экологическая медицина. 2011; 45 (2): 25-30.

3. Атякшин Д. А., Быков Э. Г. Популяционные характеристики слизистых тканевых базофилов тощей кишки монгольских песчанок после 12-суточного орбитального полета на космическом аппарате «Фотон-М3». Авиакосмическая и экологическая медицина. 2013; 47 (6): 17-24.

4. Атякшин Д. А., Быков Э. Г. Ретикулярные волокна интерстиция органов пищеварительной системы монгольских песчанок после 12-суточного орбитального полета на КА «Фотон-М3». Журнал анатомии и гистопатологии. 2013; 2 (3): 14-20.

5. Атякшин Д. А., Быков Э. Г. Состояние тучных клеток тощей кишки монгольских песчанок после космического полета. Журнал анатомии и гистопатологии. 2014; 3 (3): 15-27.

6. Афонин Б. В. Гемодинамический механизм, определяющий возникновение гиперсекреторного состояния желудка в условиях микрогравитации. Авиакосмическая и экологическая медицина. 2013; 47 (4): 10-11.

7. Бурцева А.С., Алексеева Н.Т., Атякшин Д.А. Морфологические эквиваленты функциональной активности тучных клеток тощей кишки монгольских песчанок после моделирования эффектов невесомости. Журнал анатомии и гистопатологии. 2015; 4 (4). 26-33.

8. Быков Э. Г. Популяционные характеристики тканевых базофилов. VIII Всероссийская конференция по патологии клетки: сборник трудов. Москва; 2010: 45-47.

9. Григорьев И. А., Ильин Е. А. Животные в космосе. Вестник российской академии наук. 2007; 77 (11): 963-969.

10. Зенина М. Н. Использование цитохимических исследований в лабораторной практике. Справочник заведующего КДЛ. 2009; 4: 25-29.

11. Кондашевская М. В. Тучные клетки и гепарин - ключевые звенья в адаптивных и патологических процессах. Вестник РАМН. 2010; 6: 49-54.

12. Смирнов К. В., Уголев А. М. Космическая гастроэнтерология. Трофологические очерки. Москва: Наука; 1981. 277.

13. Смирнов К. В., Уголев А. М. Пищеварение и всасывание. Человек в космическом полете. Антипов В.В., Григорьев А.И., Хантун К.Л. ред. Космическая биология и медицина. Москва: Наука; 1997. 3 (1): 357-401.

14. Atiakshin D., Samoilova V., Buchwalow I. et al. Characterization of mast cell populations using different methods for their identification. Histochemistry and Cell Biology. 2017; 147 (6): 683-694. doi: 10.1007/s00418-017-1547-7.

15. Blank U., Madera-Salcedo I. K., Danelli L. et al. Vesicular trafficking and signaling for cytokine and chemokine secretion in mast cells. Front. Immunol. 2014; 5: 453. doi: 10.3389/fimmu.2014.00453.

16. Lima H. G., Pinke K. H., Gardizani T. P. et al. Mast cells act as phagocytes against the periodontopathogen Aggregatibacter actinomycetemcomitans. Journal of periodontology. 2013; 84 (2): 265-272. doi: 10.1902/jop.2012.120087

17. Morey-Holton E. The Hindlimb Unloading Rat Model: Literature Overview, Technique Update and Comparison with Space Flight Data. Experimentation with Animal Models in Space. G. Sonnenfeld. ed. Published by B.V. Elsevier. 2005. 7-40.

18. Mulisch M., Welsch U. Romeis - Mikroskopische Technik (Gebundene Ausgabe). 18 edn, Spektrum Akademischer Verlag; 2010. 556.

19. Nawa Y., Horii Y., Okada M., Arizono N. Histochemical and cytological characterizations of mucosal and connective tissue mast cells of Mongolian gerbils (Meriones unguiculatus). International archives of allergy and immunology. 1994; 104 (3): 249-254.

20. Ronnberg E., Pejler G. Serglycin: the master of the mast cell. Methods in molecular biology. 2012; 836: 201-217.

21. Silva E. Z. M., Jamur M. C., Oliver C. Mast cell function: a new vision of an old cell. Journal of Histochemistry & Cytochemistry. 2014; 62 (10): 698-738.