Морфофункциональная оценка крупноклеточных ядер гипоталамуса крыс при интрагастральном введении формалина и перекиси водорода и дополнительном воздействии окситоцина

Цель исследования – оценить морфофункциональное состояние супраоптических и паравентрикулярных ядер гипоталамуса у крыс при длительном интрагастральном введении формалина и перекиси водорода, а так же дополнительном воздействии окситоцина.

Материал и методы. Проведена сравнительная оценка морфофункционального состояния крупноклеточных (супраоптических и паравентрикулярных) ядер гипоталамуса у двух групп крыс (n=30, самцы породы Вистар, массой 190–210 г). В течение 6 мес. каждой группе животных интрагастрально вводили смесь 0,4% раствора формальдегида и 0,4% раствора перекиси водорода в соотношении 1:1. Второй группе животных дополнительно осуществляли внутримышечно инъекцию окситоцина в дозе 0,5 мкг. Окраску парафиновых срезов толщиной 4–5 мкм проводили гематоксилином Майера и эозином, а также по Гомори–Габу. Для статистической обработки данных использовали методы непараметрической статистики на основе программы STATISTICA 6.0. Статистическая обработка включала вычисление количественных данных, представленных в виде медианы и межквартильного размаха (25-й и 75-й процентили) в формате Me [Q₁; Q₃].

Результаты. После 6 мес. введения смеси формалина и перекиси водорода в группе животных без дополнительного введения окситоцина проведена сравнительная оценка морфофункционального состояния нейросекреторных клеток (НСК) супраоптических и паравентрикулярных ядер гипоталамуса. Установлено, что в условиях длительного воздействия формальдегида и перекиси водорода на организм экспериментальных животных наблюдается блокировка высвобождения нейросекрета и истощение секреторных механизмов крупноклеточных ядер гипоталамуса (в большей степени НСК паравентрикулярных ядер). На фоне введения окситоцина, в гипоталамо-гипофизарной нейросекреторной системе отмечались адаптивные процессы в ответ на воздействие смеси формалина и перекиси водорода.

Заключение. Введение окситоцина изменяло морфофункциональное состояние изученных НСК гипоталамуса: уменьшалась доля пикноморфных клеток, сосуды микроциркуляторного русла и эпендимоциты III желудочка не имели деструктивных изменений.

1. Автандилов Г.Г. Введение в количественную патологическую морфологию; АМН СССР; Москва: Медицина, 1980. 216.

2. Бухарин О.В., Стадников А.А., Перунова Н.Б. Роль окситоцина и микробиоты в регуляции взаимодействий про- и эукариот при инфекции. Екатеринбург: УрО РАН, 2018. 247.

3. Сеньчукова М.А., Стадников А.А., Козлов А.В., Боков Д.А. Патент РФ №2401463; 2009.

4. Пирс Э. Гистохимия теоретическая и прикладная. Перевод с английского Т.В. Венкстерн и А.А. Баева; Под редакцией и с предисловием А.Н. Белозерского. Москва: Издательство иностранной литературы, 1956. 488.

5. Behtaji S, Ghafouri-Fard S, Sayad A, Sattari A, Rederstorff M, Taheri M. Identification of oxytocin-related lncRNAs and assessment of their expression in breast cancer. Sci Rep. 2021 Mar 19;11(1):6471. doi: 10.1038/s41598-021-86097-2.

6. Carter CS, Kenkel WM, MacLean EL, Wilson SR, Perkeybile AM, Yee JR, et al. Is Oxytocin "Nature's Medicine"? Pharmacol Rev. 2020 Oct;72(4):829- 861. doi: 10.1124/pr.120.019398.

7. Costa S, Costa C, Madureira J, Valdiglesias V, Teixeira-Gomes A, Guedes de Pinho P, et al. Occupational exposure to formaldehyde and early biomarkers of cancer risk, immunotoxicity and susceptibility. Environ Res. 2019 Dec;179(Pt A):108740. doi: 10.1016/j.envres.2019.108740.

8. Fenech M, Nersesyan A, Knasmueller S. A systematic review of the association between occupational exposure to formaldehyde and effects on chromosomal DNA damage measured using the cytokinesis-block micronucleus assay in lymphocytes. Mutat Res Rev Mutat Res. 2016 Oct-Dec;770(Pt A):46-57. doi: 10.1016/j.mrrev.2016.04.005.

9. Hatton GI. Function-related plasticity in hypothalamus. Annu Rev Neurosci. 1997;20:375-97. doi: 10.1146/annurev.neuro.20.1.375.

10. Liu H, Gruber CW, Alewood PF, M?ller A, Muttenthaler M. The oxytocin receptor signalling system and breast cancer: a critical review. Oncogene. 2020 Sep;39(37):5917-5932. doi: 10.1038/s41388-020-01415-8.

11. Liu Z, Wang H, Zhang C, Qi H, Li Z, Sun Y, et al. The interplay between oxytocin receptor and YAP in regulating gastric cancer progression. Oncogene. 2025 Sep;44(34):3126-3141. doi: 10.1038/s41388-025-03480-3.

12. Mehdi SF, Pusapati S, Khenhrani RR, Farooqi MS, Sarwar S, Alnasarat A, et al. Oxytocin and Related Peptide Hormones: Candidate Anti-Inflammatory Therapy in Early Stages of Sepsis. Front Immunol. 2022 Apr 29;13:864007. doi: 10.3389/fimmu.2022.864007.

13. Steele SR, Ratuski AS, Hui EI, Mahoney BS, Geronimo JT, Huss MK, et al. Oxytocin administration rescues the negative impacts of social isolation on wound healing in mice. Horm Behav. 2025 May;171:105741. doi: 10.1016/j.yhbeh.2025.105741.

14. Szeto A, Cecati M, Ahmed R, McCabe PM, Mendez AJ. Oxytocin reduces adipose tissue inflammation in obese mice. Lipids Health Dis. 2020 Aug 20;19(1):188. doi: 10.1186/s12944-020-01364-x.

15. Tabak BA, Leng G, Szeto A, Parker KJ, Verbalis JG, Ziegler TE, et al. Advances in human oxytocin measurement: challenges and proposed solutions. Mol Psychiatry. 2023 Jan;28(1):127-140. doi: 10.1038/s41380-022-01719-z