Гистотопографическая организация мышцы, поднимающей задний проход у лабораторной крысы

Вопрос морфологической организации мышцы, поднимающей задний проход, до настоящего времени остается неразрешенным вследствие методологических проблем изучения мышц тазового дна. Поэтому исследование гистологического строения мышечной ткани m. levator ani у животных имеет важное значение не только теоретическое, но и прикладное значение для изучения и моделирования состояний дисфункции тазового дна на анимальных моделях. Цель исследования – изучить энзимогистохимическую и ультрамикроскопическую организацию мышцы, поднимающей задний проход белых лабораторных крыс. Материал и методы. Работа выполнена на 10 лабораторных крысах (5 самок и 5 самцов) линии Wistar в возрасте 12–14 месяцев. Метаболический профиль мышечных волокон определяли с помощью реакции на сукцинатдегидрогеназу по Нахласу. Фотодокументирование изображений и проведение линейных измерений проводили на микроскопе Leica UC 7 (Германия), с помощью его программного обеспечения. Ультратонкие срезы контрастировали уранилацетатом и цитратом свинца, просматривали и фотографировали на электронном микроскопе Hitachi HT 7700 Exalens (Япония). Результаты. В мышце, поднимающей задний проход, присутствуют все типы мышечных волокон как медленные, так быстрые мышечные волокна IIA и IIB типов. Установлено, что суммарная площадь поперечных сечений волокон белого типа в 3 раза больше, чем суммарная площадь остальных волокон. Выявлены статистически значимые половые различия относительной площади волокон гликолитического типа в m. levator ani (p=0,009). На ультраструктурном уровне обнаружено, что в одних мышечных волокнах хорошо развит митохондриальный аппарат, в других – митохондрии немногочисленны, имеют более мелкие размеры, располагаются поодиночке между миофибриллами, не образуя скоплений. В таких волокнах между миофибриллами, располагаются крупные скопления гликогена. Заключение. У лабораторной крысы мышца, поднимающая задний проход, является неоднородной как в плане метаболической активности мышечных волокон, так и с позиций ультраструктурной организации. Такая особенность мышцы предполагает не только статическую работу в создании внутрибрюшного давления и удержании органов малого таза, но и изотоническое сокращение, в результате чего эта мышца выступает в качестве синергиста для обеспечения движения хвоста.

1. Дубинская Е.Д., Колесникова С.Н., Бабичева И.А., Пятых Н.С. Анатомические особенности структур тазового дна при ранних формах пролапса тазовых органов. Доктор. Ру. 2016;9(126):21–4.

2. Колесников Л.Л. Сфинктерология. М.: ГЭОТАР МЕДИА, 2008.

3. Ноздрачев А.Д., Поляков Е.Л. Анатомия крысы (Лабораторные животные). Под ред. академика А.Д. Ноздрачева. СПб.: Лань, 2001.

4. Пирс Э. Гистохимия теоретическая и прикладная. Москва: Иностранная литература, 1962.

5. Чемидронов С.Н., Колсанов А.В., Суворова Г.Н. Ультраструктурная организация мышечной ткани мышцы, поднимающей задний проход человека. Наука и инновации в медицине. 2023;8(3):165–8. doi: 10.35693/2500-1388-2023-8-3-165-168

6. Akın Y, Young M, Elmussareh M, Charalampogiannis N, Gözen AS. The Novel and Minimally Invasive Treatment Modalities for Female Pelvic Floor Muscle Dysfunction; Beyond the Traditional. Balkan Medical Journal. 2018 Sep 21;35(5):358–66. doi: 10.4274/balkanmedj.2018.0869

7. Aljuraifani R, Stafford RE, Hall L, van den Hoorn W, Hodges PW. Task-specific differences in respiration-related activation of deep and superficial pelvic floor muscles. J Appl Physiol. 2019 May 1;126(5):1343–51. doi: 10.1152/japplphysiol.00704.2018

8. Blomquist JL, Muñoz A, Carroll M, Handa VL. Association of Delivery Mode With Pelvic Floor Disorders After Childbirth. JAMA. 2018 Dec 18;320(23):2438–47. doi: 10.1001/jama.2018.18315

9. Cheng W, English E, Horner W, Swenson CW, Chen L, Pipitone F, et al. Hiatal failure: effects of pregnancy, delivery, and pelvic floor disorders on level III factors. International Urogynecology Journal. 2022 Sep 21;34(2):327–43. doi: 10.1007/s00192-022-05354-8

10. Milsom I, Gyhagen M. Breaking news in the prediction of pelvic floor disorders. Best Practice & Research Clinical Obstetrics & Gynaecology. 2019 Jan 1;54:41–8. doi: 10.1016/j.bpobgyn.2018.05.004

11. Yang M, Wang Q, Yu X, Chen GM, Yang XJ, Sun X, et al. Pelvic floor function of 5 143 women in early postpartum stage and analysis on the effect factors. Zhonghua Fu Chan Ke Za Zhi. 2019 Aug 25;54(8):522–6. doi: 10.3760/cma.j.issn.0529-567x.2019.08.004

12. Yiou R, Delmas V, Carmeliet P, Gherardi RK, Barlovatz-Meimon G, Chopin D, et al. The pathophysiology of pelvic floor disorders: evidence from a histomorphologic study of the perineum and a mouse model of rectal prolapse. Journal of Anatomy. 2001 Nov 1;199(5):599–607. doi: 10.1046/j.1469-7580.2001.19950599.x