Особенности распределения популяций тучных клеток в легких и селезенке на фоне моделируемой гипоксической гипоксии

Цель – изучение распределения популяций тучных клеток в легких и селезенке в зависимости от экспрессии ими протеаз в норме и разные сроки моделируемой гипоксической гипоксии.
Материал и методы. Гипоксическую гипоксию моделировали на 87 белых беспородных крысах-самцах с использованием затравочных камер объемом 200 литров. Животные находились в экспериментальных условиях четыре месяца, выведение животных из эксперимента осуществлялось через 30, 60, 90 и 120 суток. После выведения животных из эксперимента извлекались легкие и селезенку фиксировали в 10% нейтральном буферном растворе формалина «Labiko». Препараты легких и селезенки окрашивали гематоксилином и эозином, по Ван-Гизон. Для иммуногистохимических исследований применяли панель моноклональных антител: Anti-Mast Cell Tryptase antibody, Anti-Mast Cell Chymase antibody.
Результаты. При моделировании гипоксии в структурах легких на сроках 30 и 60 суток увеличивалось содержание преимущественно триптаза-положительных клеток, а к 90-м и 120-м суткам – химаза-положительных. К концу экспериментального воздействия численность триптаза-позитивных клеток увеличивалась в 3 раза, а химаза-позитивных – в 7,7 раз по сравнению с контролем. По мере увеличения срока эксперимента в селезенке увеличивалось присутствие триптаза-положительных клеток в 3,5 раза, химаза-положительных клеток – в 7 раз в структурах красной и белой пульпы.
Заключение. На фоне формирования хронической гипоксической гипоксии в организме лабораторных животных происходит перераспределение тучных клеток, экспрессирующих триптазу и химазу. Отмечено наиболее существенное увеличение числа химаза-позитивных тучных клеток как в легких, так и в селезенке.

1. Алексеева Н.Т., Глухов А.А. К вопросу о роли тучных клеток в процессе заживления ран. Вестник экспериментальной и клинической хирургии. 2011;4(4):864–71.

2. Атякшин Д.А., Бурцева А.С., Алексеева Н.Т. Триптаза как полифункциональный компо- нент секретома тучных клеток. Журнал анатомии и гистопатологии. 2017;6(1):121–32. doi: 10.18499/2225-7357-2017-6-1-121-132

3. Жиркова Е.А., Спиридонова Т.Г., Брыгин П.А. с соавт. Ингаляционная травма (обзор литературы). Журнал им. Н.В. Склифосовского «Неотложная медицинская помощь». 2019;8(2):166–74. doi: 10.23934/2223-9022-2019-8-2-166-174

4. Красавина Н.П., Целуйко С.С., Доровских В.А. Тучные клетки органов дыхания и перспективы их изучения (обзор литературы). Бюллетень физиологии и патологии дыхания. 2004;19 74–9.

5. Курбачева О. М., Амантурлиева М. Е. Роль барьерной функции слизистых оболочек при аллергических заболеваниях и при сублингвальной аллерген-специфической иммунотерапии. Бюллетень сибирской медицины. 2017;16 (2):32–46.

6. Малыхин Ф. Т., Косторная И. В. Морфологические изменения органов дыхания при хронической обструктивной болезни легких. Архив патологии. 2016; 1 (78): 42–50.

7. Мажитова М.В., Теплый Д.Л., Тризно Н.Н. Модуляция содержания конечных метаболитов No в плазме крови белых крыс под влиянием серосодержащего газа Астраханского месторождения. Международный журнал прикладных и фундаментальных исследований. 2010;(5):70.

8. Малкова Я.Г., Кальченко Г.П. Использование различных моделей гипоксии в экспериментальной фармакологии. Молодой ученый. 2010;14(3):318–9.

9. Николаева А.Г. Использование адаптации к гипоксии в медицине и спорте. Витебск: ВГМУ. 2015.

10. Титова О.Н., Кузубова Н.А., Александров А.Л., и др. Особенности иммунного ответа у больных внебольничной пневмонией с сочетанной сердечно-сосудистой патологией. РМЖ. 2020;11:59–63.

11. Целуйко С.С., Красавина Н.П., Семенов Д.А., и др. Современные взгляды на вопросы пролиферации и дифференцировки стволовых клеток органов дыхания в норме и при холодовых воздействиях. Бюллетень физиологии и патологии дыхания. 2012;45:98–103.

12. Целуйко С.С., Красавина Н.П., Саяпина И.Ю., и др. Регенерация органов: учебное пособие. Благовещенск; 2017.

13. Цибулькина В.Н., Цибулькин Н.А. Тучная клетка как полифункциональный элемент иммунной системы. Аллергология и иммунология в педиатрии. 2017; 49(2):4–11.

14. Юшков Б.Г. Клетки иммунной системы и регуляция регенерации. Бюллетень сибирской медицины. 2017;4(16):94-105.

15. Aghapour M, Ubags ND, Bruder D, Hiemstra PS, Sidhaye V, Rezaee F, et al. Role of air pollutants in airway epithelial barrier dysfunction in asthma and COPD. European Respiratory Review [Internet]. 2022 Mar 31;31(163). doi: 10.1183/16000617.0112-2021

16. Alysandratos KD, Russo SJ, Petcherski A, Taddeo EP, Acín-Pérez R, Villacorta-Martin C, et al. Patient-specific iPSCs carrying an SFTPC mutation reveal the intrinsic alveolar epithelial dysfunction at the inception of interstitial lung disease. Cell Reports. 2021 Aug;36(9):109636. doi: 10.1016/j.celrep.2021.109636

17. Kang M, Thébaud B. Stem cell biology and regenerative medicine for neonatal lung diseases. Pediatric Research. 2018 Jan 1;83(1-2):291–7. doi: 10.1038/pr.2017.232

18. Lakhdar R, Mumby S, Abubakar-Waziri H, Porter A, Adcock IM, Chung KF. Lung toxicity of particulates and gaseous pollutants using ex-vivo airway epithelial cell culture systems. Environmental Pollution. 2022 Jul 15;305:119323. doi: 10.1016/j.envpol.2022.119323

19. Lau AN, Goodwin M, Kim CF, Weiss DJ. Stem Cells and Regenerative Medicine in Lung Biology and Diseases. Molecular Therapy. 2012 Jun;20(6):1116–30. doi: 10.1038/mt.2012.37

20. Lee YG, Kang KW, Hong W, Kim YH, Oh JT, Park DW, et al. Potent antiviral activity of Agrimonia pilosa, Galla rhois, and their components against SARS-CoV-2. Bioorganic & Medicinal Chemistry. 2021 Sep;45:116329. doi: 10.1016/j.bmc.2021.116329

21. Levi-Schaffer F, Piliponsky AM. Tryptase, a novel link between allergic inflammation and fibrosis. Trends in Immunology. 2003 Apr;24(4):158–61. doi: 10.1016/s1471-4906(03)00058-9

22. McQualter JL. Endogenous lung stem cells for lung regeneration. Expert Opinion on Biological Therapy. 2019 Mar 22;19(6):539–46. doi: 10.1080/14712598.2019.1596256

23. Quantius J, Schmoldt C, Vazquez-Armendariz AI, Becker C, El Agha E, Wilhelm J, et al. Influenza Virus Infects Epithelial Stem/Progenitor Cells of the Distal Lung: Impact on Fgfr2b-Driven Epithelial Repair. Thomas PG, editor. PLOS Pathogens. 2016 Jun 20;12(6):e1005544. doi: 10.1371/journal.ppat.1005544