Некоторые морфологические особенности железистого аппарата толстой кишки при тотальном долихомегаколоне и колоноптозе

Цель – выявить особенности макро- и микроскопического строения, а также клеточного состава желез толстой кишки взрослых людей при клинически подтвержденных тотальном долихомегаколоне и колоноптозе.

Материал и методы. На тотальных препаратах толстой кишки, полученных от трупов лиц 42–87 лет, исследовали структурные перестройки железистого аппарата при тотальном долихомегаколоне (n=7) и тотальном колоноптозе (n=5), диагностированных посмертно. Микроскопическое исследование проводили на гистологических препаратах, окрашенных метиленовым синим, с последующей фиксацией в насыщенном растворе молибденовокислого (пикриновокислого) аммония, гематоксилином и эозином, пирофуксином по Ван-Гизону. Для статистической обработки данных использовали методы параметрической и непараметрической статистики на основе программы Statistica 6.0. Статистическая обработка данных включала вычисление средневыборочных показателей, их ошибок.

Результаты. Проведенный анализ клеточного состава эпителия толстой кишки при тотальном долихомегаколоне выявил прогрессивное уменьшение количества желез в проксимо-дистальном направлении с 22.5±1.1% в слепой кишке до 37±0.9% в прямой кишке. Вместе с тем уменьшалась и длина желез в среднем на 26.5±0.8% для всех отделов толстой кишки без выраженного градиента от слепой к прямой кишке. Соответственно снижению длины кишечной железы наблюдалось уменьшение количества эпителиоцитов, образующих ее стенки наиболее выраженное в нисходящей ободочной кишке – на 21.4±1.1%. Структурные изменения при тотальном колоноптозе носили схожий характер и проявлялись существенным уменьшением железистого аппарата, однако достоверных различий с группой долихомегаколона выявлено не было. При анализе клеточного компонента желез толстой кишки отмечался разнонаправленный характер изменений состава желез: снижение процентного соотношения абсорбционных клеток в среднем на 21.1±0.8% и увеличение доли бокаловидных клеток на 33.4±1.2% в среднем, что обусловлено компенсаторным повышением продукции слизи при изучаемых патологических состояниях.

Заключение. Получены актуальные данные об уменьшении числа и изменении структуры железистого аппарата всех отделов толстой кишки людей зрелого возраста на фоне клинически верифицированных тотальных долихомегаколона и колоноптоза. Характер выявленных структурно-функциональных перестроек имеет существенное значение как для проктологической практики, так и для теоретической медицины в целом.

1. Аруин Л.И. Эндокринные клетки желудочнокишечного тракта в норме и патологии. Клиническая медицина. 1975;53(1):18–26

2. Ачкасов С.И. Аномалии развития и положения толстой кишки. Клиника, диагностика, лечение. Дисс. д-ра мед. наук. М.; 2003

3. Коржевский Д.Э., Гиляров А.В. Основы гистологической техники. СПб: СпецЛит; 2010

4. Машков А.Е., Русанова Е.В., Филюшкин Ю.Н., Щербина В.И., Слесарев В.В. Дисбактериоз и его коррекция при хроническом толстокишечном стазе у детей с долихосигмой. Детская хирургия. 2014;18(2):7–10

5. Никитюк Д.Б., Колесников Л.Л., Шадлинский В.Б., Баженов Д.В., Алексеева Н.Т., Клочкова С.В. Многоклеточные железы стенок пищеварительной и дыхательной систем (вопросы функциональной морфологии). Воронеж: Научная книга; 2017

6. Романов П.А. Клиническая анатомия вариантов и аномалий толстой кишки. М.: Медицина; 1987

7. Сапин М.Р., Никитюк Д.Б., Шадлинский В.Б., Мовсумов Н.Т. Малые железы пищеварительной и дыхательной систем. М.: Джангар; 2001

8. Шестаков А.М. Морфологические характеристики желез в стенках прямой кишки при левостороннем долихомегаколоне. Морфологические ведомости. 2006;№1-2:131

9. Яницкая М.Ю. Типы толстой кишки, выявляемые методом гидроэхоколонографии при хронических запорах у детей. Вестник новых медицинских технологий. 2013;20(4):31–7

10. Яхонтова О.И., Рутгайзер Я.М., Валенкович Л.Н. Хронические болезни кишечника. СПб.; 2002

11. Carignan CS, Yagi Y. Optical endomicroscopy and the road to real-time, in vivo pathology: present and future. Diagnostic Pathology. 2012 Aug 13;7(1):98. doi: 10.1186/1746-1596-7-98

12. Dieterich W, Schink M, Zopf Y. Microbiota in the Gastrointestinal Tract. Medical Sciences [Internet]. 2018 Dec 14;6(4):116.

13. El-Salhy M, Gundersen D, Hatlebakk JG, Gilja OH, Hausken T. Abnormal rectal endocrine cells in patients with irritable bowel syndrome. Regulatory Peptides. 2014 Jan;188:60–5.

14. Ficsor L, Varga VS, Tagscherer A, Tulassay Z, Molnar B. Automated classification of inflammation in colon histological sections based on digital microscopy and advanced image analysis. Cytometry Part A. 2008 Mar;73A(3):230–7.

15. Kim YS, Ho SB. Intestinal Goblet Cells and Mucins in Health and Disease: Recent Insights and Progress. Current Gastroenterology Reports. 2010 Aug 13;12(5):319–30.

16. Okamoto R, Watanabe M. Functional relevance of intestinal epithelial cells in inflammatory bowel disease. Japanese Journal of Clinical Immunology. 2016;39(6):522–7. doi: 10.2177/jsci.39.522

17. Shi J, Wang Y, He J, Li P, Jin R, Wang K, et al. Intestinal microbiota contributes to colonic epithelial changes in simulated microgravity mouse model. The FASEB Journal. 2017 Aug;31(8):3695–709. doi: 10.1096/fj.201700034R

18. Tezuka T, Ozawa T, Takado Y, Sato Y, Oyake M, Nishizawa M. Megacolon in multiple system atrophy: Safety concerns related to PEG. Movement Disorders. 2009 Feb 25;24(7):1096–7.