Эффективность сперматогенеза у котов в зависимости от возраста

Целью настоящего исследования является изучение эффективности сперматогенеза у старых и молодых котов.

Материал и методы. Материал собран в летний период от 16 котов различного возраста в ветклиниках г. Воронежа при проведении стерилизации животных. Семенники фиксировали в жидкостях Штиве, Буэна. Материал заливали в парафин и готовили серии парафиновых срезов, толщиной 4–5 мкм. Срезы окрашивали гематоксилином и эозином, железным гематоксилином, азаном по Гейденгайну, по методу трихром-ШИК и тетрахром-ШИК. С помощью винтового окуляр-микрометра измеряли диаметр семенных канальцев и канала придатка семенника (по 50 измерений для каждого животного). Для определения эффективности сперматогенеза при увеличении ×900 подсчитывали количество сперматоцитов первого порядка в стадии зиготены и пахитены, ранних сперматид (по 50 канальцев для каждого животного). Нормальность распределения определяли с помощью критерия Колмогорова – Смирнова и поправки Лиллиефорса. Результаты измерений обрабатывали с помощью непараметрического U-критерия Манна–Уитни. Статистически значимыми считались изменения при Р<0.05.

Результаты. Максимальный диаметр семенных канальцев и канала придатка семенника выявлен у животных в возрасте двух лет. Эти показатели у котов в возрасте 8 лет уменьшаются на 29.2% и 17.0% соответственно. Сравнивая численность гибнущих клеток у старых и молодых животных, можно отметить, что у котов в возрасте 8 лет увеличивается численность гибнущих сперматид, при этом эффективность сперматогенеза статистически значимо уменьшается на 19.1% .

1. Котарев В.И., Ульянов А.Г., Торгун П.М. Эффективность сперматогенеза как показатель воспроизводительных качеств баранов. Ветеринарный фармакологический вестник. 2019;3:117–30 [Kotarev VI, Ulyanov AG, Torgun PM. Spermatogenesis efficacy as the rate of reproduction properties in rams. Bulletin of veterinary pharmacology. 2019 Oct;3:117–30] (in Russian). doi: 10.17238/issn2541-8203.2019.3.117

2. Dzimira S, Nizanski W, Madej JA. Morphological analysis of testicles in cats with disorders of sex development. Polish Journal of Veterinary Sciences. 2017 Mar 28;20(1):123–31. doi: 10.1515/pjvs-2017-0016

3. Elcock L, Schoning P. Age-related changes in the cat testis and epididymis. Am J Vet Res. 1984;45:2380–4.

4. França LR, Godinho CL. Testis Morphometry, Seminiferous Epithelium Cycle Length, and Daily Sperm Production in Domestic Cats (Felis catus). Biology of Reproduction. 2003 May 1;68(5):1554–61. doi: 10.1095/biolreprod.102.010652

5. Ortavant R. Déroulement et duree du cycle spermatogenetique chez le belier. Annales de Zootechnie. 1959;8(3):183–244. doi: 10.1051/animres:19590301

6. Roosen-Runge E. Untersuchungen uber die Degeneration samenbildender Zellen in der normalen Spermatogenese der Ratte. Zeitschrift fur Zellforschung und Mikroskopische Anatomie. 1954;41(3–4):221–35. doi: 10.1007/bf00340602

7. Ryu B-Y, Orwig KE, Oatley JM, Avarbock MR, Brinster RL. Effects of Aging and Niche Microenvironment on Spermatogonial Stem Cell Self-Renewal. Stem Cells. 2006 Feb 2;24(6):1505–11. doi: 10.1634/stemcells.2005-0580

8. Sa´nchez B, Pizarro M, Garcia P, Flores JM. Postnatal development of seminiferous tubules in the cat. J Reprod Fertil Suppl 1993; 47:343– 348.

9. Siemieniuch MJ, Woclawek-Potocka I. Morphological Features of The Seminiferous Epithelium in Cat (Felis catus, L. 1758) Testes. Journal of Reproduction and Development. 2007;53(5):1125–30.

10. Zhang X, Ebata KT, Robaire B, Nagano MC. Aging of Male Germ Line Stem Cells in Mice1. Biology of Reproduction. 2006 Jan 1;74(1):119–24. doi: 10.1095/biolreprod.105.045591